Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ). Культуральная инактивированная вакцина против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота

14.05.2015

Использование современных многокомпонентных комбинированных вакцин позволяет эффективно контролировать инфекционный фон заболеваний крупного рогатого скота. Основное преимущество этих препаратов заключается в том, что применение одной вакцины может предотвратить развитие сразу нескольких инфекций, снизить антигенную нагрузку на организм и уменьшить количество болезненных инъекций.
Как правило, вакцинацию крупного рогатого скота проводят против вирусных заболеваний ИРТ, ВД, ПГ-3, РСИ, пастереллеза, лишая, сибирской язвы, клостридиозов и лептоспироза. Животных прививают поэтапно, в несколько подходов, на протяжении определенного времени, каждый раз подвергая их дополнительному стрессу, что в итоге сказывается на общем состоянии организма. В некоторых хозяйствах количество вакцинаций за первый год жизни молодняка доходит до десяти и более раз.
При использовании многокомпонентных вакцин, например Суправака 10, в первый год жизни телят достаточно сделать три прививки, чтобы они приобрели иммунитет против основных вирусных заболеваний, пастереллеза и лептоспироза. Взрослым животным необходима всего одна доза раз в шесть месяцев (табл. 2).
Суправак 10 относится к классу вакцин, которые дают высокий иммунный ответ против таких заболеваний, как ИРТ, ВД, ПГ-3, РСИ, пастереллез, лептоспироз. Препарат обеспечивает защиту от Pasteurella haemolytica вместе с вирусами и надежно оберегает легкие от проникновения патогенов.
Бактерия Pasteurella haemolytica рассматривается как часть нормальной микрофлоры верхних дыхательных путей крупного рогатого скота, но не в качестве нормальной микрофлоры легких. Пока Pasteurella haemolytica обитает в верхних дыхательных путях, клинические респираторные заболевания не проявляются. У здорового поголовья Pasteurella haemolytica разрушается антителами и удаляется макрофагами. Когда нарушается легочная защита (причиной, как правило, могут послужить вирусы ПГ-3, РСИ, ИРТ и ВД), у животных развивается пневмония. Условно патогенная микрофлора (в том числе Pasteurella haemolytica) становится патогенной и легко распространяется, особенно когда телята скученны и находятся в тесном контакте (при транспортировке, перегруппировке и т.д.). На фоне ослабленного иммунитета легкие заселяют и другие патогены.
Для создания хорошего иммунитета у молодняка необходимо правильно определить, в каком возрасте лучше проводить вакцинацию. Это напрямую зависит от напряженности колострального иммунитета. Первую прививку следует делать, как только уровень колостральных антител упадет ниже нейтрализующего. Если во время сухостоя коров вакцинировали Суправаком 10, то колостральный иммунитет у телят держится до трех месяцев. То есть рекомендованный возраст для первой вакцинации - 2,5–3 месяца (табл. 1, схема 1).

Таблица 1
Возраст Вакцинация
Схема 1
3 мес. первая
4 мес. вторая
10 мес. ревакцинация
Схема 2
21 день первая
51 день вторая
8 мес. ревакцинация

Таблица 2
Схемы вакцинаций крупного рогатого скота против вирусных заболеваний вакциной Суправак 10 (доза 5 мл)

Показатель Вакцинация
Сухостойные животные
за 60 дней до отела первая
за 30 дней до отела вторая

Взрослые животные Ревакцинация один раз в 6 мес.

При неблагополучной обстановке по респираторным заболеваниям в хозяйстве (неудовлетворительное содержание сухостойных коров, скученность молодняка), инъекции телятам можно начинать с возраста 21–45 дней (табл. 1, схема 2). Для закрепления иммунитета крайне важно провести повторную прививку ровно через шесть месяцев после первой, а затем ревакцинировать молодняк раз в полгода одной дозой.
Под ответственность ветеринарного врача в хозяйстве могут быть приняты и другие схемы вакцинации.

Инструкция по применению инактивированной комбинированной вакцины Комбовак-А против
инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной,
рота-, коронавирусной болезней и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота
(организация-разработчик - ООО «Ветбиохим», г. Москва)

I. Общие сведения
Торговое наименование - вакцина Комбовак-А.
Международное непатентованное наименование - вакцина инактивированная комбинированная против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота-, коронавирусной болезней и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота.

Лекарственная форма - эмульсия для инъекций.
Вакцина Комбовак-А изготовлена из культуральной жидкости, инфицированной вирусами: инфекционного ринотрахеита (шт. В-25/шт. Т), парагриипа-3 (шт. В-19/шт. ВС-05), вирусной диареи (шт. СТ-89/шт. Т-04), респираторно-синцитиальным (шт. 89/шт. ТИ), рота- (шт. К-88), корона- (шт. КВ-90) и аденовирусами (шт. «Альфа») крупного рогатого скота, инактивированной формалином с добавлением 50% масляного адъюванта.
По внешнему виду вакцина представляет собой эмульсию белого или бледно-розового цвета, при хранении которой допускается незначительное отслоение эмульсии.
Вакцина расфасована по 10 мл (5 доз) и 100 мл (50 доз) в стеклянные или полимерные флаконы соответствующей вместимости, укупоренные резиновыми пробками, укрепленными алюминиевыми колпачками.
Флаконы с вакциной вместимостью 10 мл упакованы в картонные (пластиковые) коробки. Коробки с вакциной и флаконы вместимостью 100 мл упакованы в ящики (или другую транспортную упаковку). В каждую коробку с вакциной вкладывают инструкцию по ее применению.
Срок годности вакцины 18 месяцев от даты выпуска при соблюдении условий хранения и транспортирования. По истечении срока годности вакцина к применению не пригодна.
Вакцину хранят и транспортируют в сухом темном месте при температуре от 2°С до 8°С. Следует хранить в местах, недоступных для детей.
Флаконы с вакциной, подвергшиеся замораживанию, без этикеток, с нарушенной укупоркой и целостностью, измененным цветом, содержащие посторонние примеси, а также вакцину, не использованную в день вскрытия флакона, выбраковывают и обезвреживают путем кипячения в течение 15 мин с последующей утилизацией.
Утилизация обеззараженного препарата не требует соблюдения специальных мер предосторожности.

II. Биологические свойства
Вакцина Комбовак-А вызывает формирование иммунного ответа у крупного рогатого скота к инфекциям, обусловленным вирусами инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальным вирусом, ротавирусом, коронавирусом и аденовирусами КРС через 14 суток после двукратного применения, продолжительностью 8 месяцев у взрослых животных и 6 месяцев у молодняка в возрасте до 1 года.

Иммунитет от коров, вакцинированных в последний период стельности, передается потомству с молозивом. Колостральный иммунитет у новорожденных телят наступает после своевременной выпойки молозива (не позднее 2 ч после рождения).
Вакцина безвредна, лечебными свойствами не обладает.

III. Порядок применения
Вакцина Комбовак-А предназначена для профилактики инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота-, корона- и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота в неблагополучных и угрожаемых по данным болезням хозяйствам.

Запрещено прививать клинически больных и/или ослабленных животных.

Вакцину вводят внутримышечно взрослым животным в дозе 3 мл, телятам до 1 года - в дозе 2 мл с соблюдением общепринятых правил асептики. Для инъекции используют только стерильные материалы и инструменты. Для каждого животного используют отдельную иглу или шприц.
Перед применением в холодное время года вакцину подогревают в водяной бане до температуры 36-38°С, перед и в процессе применения флаконы с вакциной взбалтывают до образования однородной эмульсии.

Схема вакцинации №1 . Коров и телок случного возраста вакцинируют двукратно: за 4 и 1 неделю до осеменения, а затем ревакцинируют перед отелом дважды: первый раз - за 50-60 суток до отела, второй раз - через 14-21 сутки (но не позднее 30 суток до отела).

Схема вакцинации №2 . Все поголовье животных старше года прививают каждые 6 месяцев двукратно с интервалом 14-21 сутки. Не рекомендуется вакцинировать животных за 30 суток до отела и в течение 3 недель после отела.

Независимо от применяемой схемы вакцинации взрослого поголовья, телят вакцинируют в возрасте 7-10 суток и старше дважды с интервалом 20-25 суток. Ревакцинацию проводят однократно в той же дозе в возрасте 6 месяцев.

Быков-производителей вакцинируют каждые 6 месяцев двукратно с интервалом 14-21 сутки.

Симптомов проявления болезней, обусловленных вирусами инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальным, рота-, корона- и аденовирусами, или других патологических признаков при передозировке вакцины Комбовак-А не выявлено.
Особенностей поствакцинальной реакции при первичной иммунизации и ревакцинации не установлено.
Следует избегать нарушений схемы вакцинации, поскольку это может привести к снижению эффективности иммунопрофилактики болезней, обусловленных вирусами инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальным, рота-, корона- и аденовирусами. В случае пропуска очередного введения вакцины необходимо провести иммунизацию как можно скорее.
При применении вакцины в соответствии с настоящей инструкцией побочных явлений не отмечается. На месте инъекции возможно появление безболезненной, ограниченной припухлости.

Вакцину Комбовак-А не применяют в одном шприце с другими биопрепаратами и лекарственными средствами.

Убой животных на мясо разрешается не ранее 3 недель после вакцинации.
Молоко от вакцинированных животных, мясо и продукты убоя реализуют без ограничения.

IV. Меры личной профилактики
При работе с вакциной следует соблюдать общие правила личной гигиены и техники безопасности, предусмотренные при работе с лекарственными средствами ветеринарного назначения.
Все лица, участвующие в проведении вакцинации должны быть одеты в спецодежду (резиновые сапоги, халат, брюки, головной убор, резиновые перчатки) и обеспечены индивидуальными средствами защиты; очками закрытого типа. В местах работы должна быть аптечка первой доврачебной помощи.
При попадании вакцины на кожу и/или слизистые оболочки их рекомендуется промыть большим количеством водопроводной воды. В случае разлива вакцины зараженный участок пола или почвы заливают 5% растворами хлорамина или едкого натрия. При случайном введении препарата человеку место введения необходимо обработать 70%-ным раствором этилового спирта, обратиться в медицинское учреждение и сообщить об этом врачу.

Организация производитель: ООО «Ветбиохим». Адрес производства: 123098, г. Москва, ул. Гамалеи, д. 16.

ИРТ поражает преимущественно молодняк в крупных хозяйствах и характеризуется в основном острым воспалением верхних дыхательных путей и наружных половых органов. ИРТ проявляется в субклинической, легко и тяжело протекающих формах. Заболеваемость может достигать 100%, а смертность - 10%, особенно в период комплектования стад . Заболевание может распространяться при искусственном осеменении инфицированной спермой . Иногда наблюдают поражение (обычно у телят) центральной нервной системы. Штаммы, выделенные от телят и обладающие нейропатогенными свойствами, вероятно, представляют собой антигенный вариант вируса. Заболевание может протекать в виде ринотрахеита или пустулёзного вульвовагинита. Две формы течения заболевания вызываются разными подтипами (1 и 2) одного вируса и, по- видимому, связаны с различиями их органного тропизма. Может быть, поэтому обе эти формы не встречаются одновременно в одном и том же хозяйстве . Подтипы 1 и 2 герпесвируса крупного рогатого скота типа 1, вызывающие соответственно поражения респираторного тракта (инфекционный ринотрахеит) и гениталий (инфекционный вульвовагинит), не различаются по биологическим и серологическим свойствам, но их можно различить методом рестрикционного анализа генома. Циркуляция среди овец и коз вируса, близкородственного ГВ крупного рогатого скота типа 1, свидетельствует о том, что овцы и козы, вероятно, могут быть естественными хозяевами этого вируса. Во время температурных пиков животные быстро худеют, у лактирующих - резко снижается удой, у стельных коров часто наблюдают аборты. Вторичные инфекции усугубляют течение болезни. После острого периода болезни вирус длительное время сохраняется в организме без каких-либо клинических признаков.
Вирус обычно персистирует в региональных ганглиях в виде ДНК-копий. Факторами, способствующими переходу латентной инфекции в острую, могут быть стрессы различной природы, отелы, а в некоторых случаях неправильно проведенная вакцинация животных живой вакциной. Транспортировка животных после вакцинации может приводить к реактивации вакцинального вируса, по-видимому, вследствие повышения концентрации кортикостероидов в крови. Серонегативность при ИРТ не обязательно свидетельствует об отсутствии виру- соносительства.
В состоянии латенции подавляется генетическая экспрессия вируса. Развитие латенции и реактивация возбудителя регулируются иммунными и неиммунными механизмами. Активизация инфекции под действием дексаметазона происходит путем подавления иммунного механизма и прямого воздействия на ла- тентноинфицированные клетки.

Препарат способен реактивировать как «дикий», так и вакцинный штаммы. Реактивированные штаммы не отличаются от исходных. Реактивацию вируса ИРТ в эксперименте наблюдали спустя более 600 дней после инфицирования крупного рогатого скота .
Переболевание сопровождается стойким и длительным иммунитетом, который может передаваться потомству с антителами молозива. Однако даже выраженный гуморальный иммунитет не предотвращает персистенции вируса. В случае реинфекции вновь происходит размножение и выделение вируса, хотя болезнь протекает без видимых клинических признаков. При возникновении повторного заболевания трудно бывает отличить реинфекцию от реактивации персистируюшего вируса. Всех животных, имеющих антитела к ГВ типа 1 крупного рогатого скота, следует считать носителями вируса, находящегося в состоянии латенции.
Слизистые оболочки респираторного и генитального трактов больных животных продуцируют IgA и интерферон . Антитела в сочетании с комплементом ограничивают, но не исключают распространение герпесвируса в организме. Взаимодействие антител с клетками иммунной системы является более эффективным механизмом ограничения инфекции. Наиболее важными эффекторными клетками в антителозависимой цитотоксичности являются полиморфноядерные нейтрофилы, которые при наличии комплемента проявляют активность в отсутствие специфических антител. В подавлении инфекции клеточный иммунитет при ИРТ более эффективный, чем гуморальный, и в основном связан с Т-лимфо- цитами и макрофагами, хотя и те и другие могут поражаться вирусом.
В качестве средств специфической профилактики ИРТ в различных странах применяют живые и инактивированные вакцины. Однако в большинстве стран применяют в основном живые вакцины из аттенуированных штаммов вируса . Созданы живые маркированные вакцины на основе рекомбинантной ДНК, из которой удалены ген тимидинкиназы и другие гликопротеиновые «маркерные» гены. Вакцинация против ИРТ не предотвращает инфицирования, но зато снижает частоту возникновения (проявления) и тяжесть заболевания. Полевой вирус в организме таких животных размножается менее активно, и продолжительность его выделения короче .
Традиционные живые вакцины при ИРТ отличаются большим разнообразием. Например, в США применяют несколько живых вакцин. Большинство из них - штаммы вируса, аттенуированные длительным пассированием в первичных культурах или постоянных линиях клеток. При вакцинации живыми вакцинами необходимо использовать такие вакцинные штаммы, которые неспособны к персистенции, ибо не исключается возможность возникновения рекомбинантных вариантов при взаимодействии аттенуированного и вирулентного штаммов вируса. Имеются вакцины, полученные другим способом. Бельгийская вакцина представляет собой ts-мутант, который при 30°С размножается лучше, чем при 37°С, даже после реизоляции. Иными словами, вакцинный штамм обладает «маркером», отличающим его от полевого вируса. Подобный термочувствитель
ный мутант получен в Японии. Он сохранял свойства аттенуированного штамма после пяти пассажей на крупном рогатом скоте .
В качестве живой вакцины предложен дефектный по тимидинкиназе (ТК-) мутант. Интраназальное и внутримышечное введение вакцины телятам не вызывало развития у них признаков болезни, но способствовало образованию нейтрализующих антител и устойчивости к последующему интраназальному заражению вирулентным штаммом вируса, снижало его репродукцию в слизистой носа. Вакцинный (ТК-) штамм способен персистировать в организме привитых телят не менее 3 мес. и передаваться телятам при контакте без перехода в ТК+ генотип.
Персистенция и экскреция аттенуированного штамма вируса обнаружена также при применении других живых вакцин. Особенно часто и длительно вакцинный штамм вируса выделяется с семенной жидкостью привитых быков. Введение живой вакцины во время эстрального периода может сопровождаться поражением яичников , а вакцинация в ранний период стельности - к прерыванию беременности .
Считается, что интраназальная вакцинация более эффективна, чем подкожная или внутримышечная. Повторное введение вакцины усиливает иммунитет. Имеется ряд сообщений об успешном применении комбинированных вакцин против 2-4 возбудителей. В состав таких вакцин, кроме аттенуированного штамма вируса ИРТ, чаще всего входят аттенуированные штаммы вирусов парагриппа-3 и вирусной диареи крупного рогатого скота. Имеются данные, свидетельствующие об активизации носительства и выделении вируса ИРТ (вакцинного и полевого штаммов) у телят после заражения вирусом парагриппа-3 .
При интраназальном введении вакцинный вирус быстро проникает в клетки верхних дыхательных путей и глоточного кольца. Размножаясь в указанных клетках, вирус может выделяться во внешнюю среду в течение двух недель. После парентерального введения вакцинный вирус из секретов выделяется не всегда и с трудом.
Преимущество интраназальной вакцинации состоит в том, что при этом усиливается синтез IgA и локальное образование интерферона. Считается, что сухая вакцина для парентерального или интраназального применения должна содержать соответственно 105 и 104 ТЦД50/мл. Наряду с живыми вакцинами применяют инактивированные, обладающие рядом преимуществ, хотя их изготовление связано с дополнительными затратами. Инактивированные вакцины так же, как и живые, применяют двукратно с 2-3-недельным интервалом. Они могут существовать в виде моно- и комбинированных препаратов. Эффективность инактивированных вакцин против ИРТ зависит от ряда факторов, и прежде всего от концентрации протективных адъювантов.
Различные способы инактивации вируса оказывали неодинаковое влияние на антигенные детерминанты - мишени вируснейтрализующих антител. По степени разрушения антигенных детерминант инактиваторы располагались следующим образом: ультрафиолетовое облучение, нагревание (56°С), (3-пропиолак- тон и формальдегид. Согласно этим данным последнему должно отдаваться
предпочтение при изготовлении инактивированной вакцины . С целью повышения иммуногенности вакцины вирусные антигены концентрировали поли- этиленгликолем.
Инактивированная формолвакцина с масляным адъювантом из вируса ИРТ с исходным титром 108 ТЦД50/мл после двукратного введения в дозе 2 мл с 4-недельным интервалом индуцировала у телят выраженный иммунитет независимо от предшествующего иммунного фона. У телят, перенесших спонтанную инфекцию с низким титром сывороточных и отсутствием секреторных антител, после вакцинации формировались гуморальные (1:128 - 1:256) и секреторные (1:2-1:8) антитела. Наблюдалась корреляция между уровнем сывороточных антител и устойчивостью телят к заражению. Иммуносупрессия дексаметазоном показала, что вакцинация серонегативных телят не предупреждала от инфицирования и последующей латенции вируса.
В неблагополучном по ИРТ хозяйстве применяли вакцину с масляным адъювантом и ГОА. Сероконверсия наблюдалась уже после первого введения вакцины. Титр колостральных антител в сыворотке крови 6-8-дневных телят от привитых матерей был высоким. В стадах, где клиническая картина ИРТ была стертой, в сыворотке крови телят от привитых матерей титр антител составил 1:76 (у контрольных животных 1:13). Колостральный иммунитет длился 4-5 мес. Вакцинация телят вызывала сероконверсию лишь тогда, когда уровень материнских антител у них был очень низким .
Инактивированные вакцины против ИРТ и против ИРТ и ПГ-3 оказались эффективными при испытании в производственных условиях. Вакцинальный иммунитет у телят развивался, несмотря на высокий уровень колостральных антител . Иммуногенность субъединичной и инактивированной вакцин с масляным адъювантом оказалась сходной. Титр гуморальных антител у крупного рогатого скота после однократного и двукратного применения субъединичной вакцины был выше, чем при вакцинации инактивированной вакциной. Секреторные антитела формировались лишь после двукратной вакцинации и были равнозначными у животных, привитых обоими препаратами. Через 14 дней после второй прививки телята были устойчивы к интраназальному заражению вирулентным штаммом вируса ИРТ. Интенсивность размножения и продолжительность экскреции вирулентного штамма у животных, вакцинированных обеими вакцинами, были сходными. Иммунизированные телята выделяли меньше вируса и менее продолжительное время, чем непривитые.
Считают, что двукратное введение инактивированной вакцины сообщает привитым животным иммунитет продолжительностью 2 года . Имеется хороший опыт сочетанного применения живой и инактивированной вакцины ИРТ и ФРГ. Живую вакцину вводили двукратно с интервалом в 6 недель сразу после установления диагноза. Спустя 7 мес. двукратно с тем же интервалом вводили инактивированную вакцину. В результате такой вакцинопрофилактики новые случаи заболевания не регистрировали. Спустя четыре года после прекращения вакцинации животные оказались серонегативными, за исключением неко
торых телят, имевших материнские антитела перед вакцинацией. Авторы оценивают предложенную схему применения живой и инактивированной вакцины как эффективную для оздоровления поголовья . Комбинированная инактивированная вакцина, включающая высокоактивные антигены вирусов ИРТ, вирусной диареи и парагриппа-3, оказалась эффективным средством профилактики массовых патологических состояний, в том числе связанных с транспортировкой скота.
Испытание иммуногенности маркированной делеционной (gE") вакцины против ГВ-1 КРС на телятах показало, что внутримышечная или назальная иммунизация полностью не защищают от латентного инфицирования вирулентным штаммом гомологичности вируса . Инактивированная маркированная вакцина против ИРТ из негативного по гликопротеину Е штамма позволяла дифференцировать вакцинированных и инфицированных животных. Иммуногенность вакцины зависела от концентрации вирусного антигена .
Поскольку вирус ИРТ может приживляться и длительно персистировать в организме вакцинированных животных, трудно однозначно ответить на вопрос о значении специфической профилактики в оздоровлении хозяйств от ИРТ, или точнее: можно ли путем систематического применения вакцин освободить хозяйство от носительства полевых штаммов вируса. Однако имеется сообщение о том, что полного оздоровления можно достичь в результате систематического (четырехлетнего) применения в хозяйстве инактивированной эмульгированной вакцины.
Таким образом, существующие средства вакцинопрофилактики защищают крупный рогатый скот от инфекционного ринотрахеита, но не от заражения полевым вирусом, установления его латенции и последующей реактивации, реэкскреции. Однако живые вакцины при интраназально-внутримышечном применении обусловливают хороший локальный иммунитет и защиту животных от клинического проявления инфекции. Инактивированные высокоантигенные вакцины после повторного введения также индуцируют локальный иммунитет и предотвращают распространение вируса. Перспективным является разработка высокоэффективных рекомбинантных субъединичных вакцин, основанных главным образом на иммуногенности одного из главных гликопротеинов оболочки вириона, особенно гликопротеина Д. Этот гликопротеин может быть экспрессирован в бакуловирусной системе или включен в геном векторного вируса и использован в качестве живой вакцины.
Многие европейские страны для искоренения болезни используют интегрированную программу, включающую иммунизацию маркированными вакцинами, выявление и убой всех животных, имеющих антитела на полевой вирус.

Новый подход к профилактике ринотрахеита.

Олейник А.В. к.б.н. технический специалист по КРС - компания Интервет

Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ) - вирусное заболевание, резко снижающее уровень воспроизводства. Трудно возразить этому если под снижением репродукции понимать: снижение уровня плодотворных осеменений, эмбриональную смертность, аборты, задержания последа, вагиниты, эндометриты, а также (что очень важно!) снижение сохранности молодняка и получение некондиционных телят (задохликов, санбрак, заморышей и т.д.). Даже если при идеальных 100 телятах от 100 отелившихся коров сохранность молодняка в хозяйстве составляет 80% и из них 20% "некондиции", то в результате получаем только 30 телочек пригодных к ремонту. Важно заметить, что в данном случае не представляется возможным проводить какую-либо селекционную работу - отбор по продуктивности матерей, экстерьеру и т.д. Этот пример наглядно показывает, как снижает уровень воспроизводства стада сохранность молодняка. Заболевание животных ИРТ в той или иной степени негативно сказывается на всех вышеперечисленных показателях.
Что мы знаем о болезни?

ИРТ - болезнь, вызываемая бычьим герпесвирусом первого типа (BHV-1). Заражение, в основном, происходит воздушно-капельным путем от больного животного или вирусоносителя, а также вертикальным путем при естественной случке от инфицированного быка-производителя или с зараженной спермой при искусственном осеменении. При попадании в организм вирус локализуется в эпителии дыхательных путей и репродуктивного тракта.
Клинически ИРТ проявляется ринитами, трахеитами, пневмониями, конъюнктивитами, артритами и энцефалитами (у телят), а также вульвовагинитами, абортами, эндометритами и орхитами (у взрослых животных).
Смертность от ИРТ, как правило, не превышает 20%, но при осложнении вторичной микрофлорой (сальмонеллами, пастереллами и др.) этот показатель резко возрастает.
Весь экономический ущерб от ИРТ достаточно трудно посчитать, так как снижение уровня репродукции в подавляющем большинстве случаев имеет полиэтиологичную структуру, с множеством факторов влияющих и на сохранность молодняка, и на плодовитость коров. Очевидно только одно - не решив проблему с ИРТ в хозяйстве, нет смысла рассчитывать на получение удовлетворительных результатов с воспроизводством стада.

Какие существуют способы профилактики в настоящее время?

Способ №1 - самый простой и имеющий абсолютную (!) эффективность. Смысл заключается в том, чтобы не занести вирус в хозяйство. Собственно говоря - это и весь способ! Предвижу скепсис многих читателей. Однако, большинство ветеринарных специалистов не знает как гарантированно избежать заноса инфекции. Итак, по порядку.

а) при покупке скота необходимо исследовать сыворотки крови на наличие антител к гликопротеинам gE+ и gE− вируса BHV-1 . Важно, чтобы пробы были отобраны в хозяйстве-продавце в присутствии специалистов из хозяйства-покупателя. Далее сыворотки направляются в лабораторию, которая работает с тест-системами IDEXX. Отрицательные результаты исследования на gE+ и gE− свидетельствуют об отсутствии вирусоносительства и каких-либо вакцинаций против ИРТ у покупаемых животных. Положительные результаты на gE− и отрицательные на gE+ свидетельствуют об отсутствии вирусоносительства у животных и о вакцинации их маркированной вакциной. Положительные результаты на gE− и gE+ свидетельствуют о вирусоносительстве животных, которых прививали маркированной вакциной. Положительные результаты на gE+ и отрицательные на gE− свидетельствуют о том, что животные являются носителями инфекции и (или) были привиты обычной вакциной против ИРТ.
Вопрос: какой скот можно покупать, а какой нет?
Ответ: можно покупать скот только с отрицательными результатами к гликопротеину gE+ вируса BHV-1, т.е. первый и второй варианты результатов.
Следует разъяснить ситуацию по животным вакцинированных немаркированными вакцинами. Все российские вакцины, а также бóльшая половина импортных содержат немаркированные (неотличимые от полевого вируса) вакцинные штаммы BHV-1. В результате прививки такими живыми или инактивированными препаратами в крови образуются антитела абсолютно идентичные антителам полевого вируса. Поэтому нет никакой гарантии отсутствия вирусоносительства у животных привитых немаркироваными вакцинами, как, впрочем, нет гарантии и присутствия полевого вируса в организме таких телят и коров.
б) второе, что следует делать, чтобы избежать инфицирования стада - это исключить контакт с "чужим" скотом при выпасе.
в) не допускать покупки кормов (сена, сенажа, силоса) в хозяйствах с неизвестным эпизоотическим статусом по ИРТ.

Таким образом, не используя вакцинации против ИРТ, можно гарантированно (!) иметь благополучное стадо по инфекционному ринотрахеиту КРС.
В том случае, когда свободный от вируса скот находится в непосредственной близости с неблагополучным хозяйством, следует прививать животных живыми или инактивированными маркированными (gE−) вакцинами. Какой прививать, живой или инактивированной маркированной вакциной - это вопрос противопоказаний и безопасности живой вакцины, а также степени угрозы заноса инфекции из вне.

Способ № 2 , а также все остальные способы касаются хозяйств фактически (!) неблагополучных по ИРТ.
В этом способе вообще не участвуют средства специфической профилактики.

В чем же суть метода? Речь идет о барьерном способе сдерживания инфекции (не только ИРТ).

а) система пусто-занято.
б) строго соблюдать нормы содержания газов, пыли, бактерий в воздухе
г) систематические дезинфекции с обязательным бактериологическим контролем качества до точного подбора вида дезсредства, режима и концентрации.
Смысл систематических дезинфекций заключается в одном простом правиле - при любом движении поголовья (внутри хозяйства, отделения, телятника) животные должны перемещаться из своих клеток (боксов, загонов) в чистые и продезинфицированные клетки (боксы, загоны). И это должно быть "железным" правилом, ни при каких обстоятельствах не нарушаемым.
в) в хозяйстве организовано родильное отделение с боксами и изоляторы для больных животных всех возрастов.
После отела теленок отнимается немедленно в отдельную клетку, плацента уничтожается, бокс после каждого отела дезинфицируется.
Любое заболевшее животное с малейшими подозрениями на инфекцию (повышенная температура, кашель, диарея и т.п.) немедленно отправляется в изолятор для лечения. Идея проста - чем меньше времени больное животное контактировало со здоровыми, тем меньше вероятность перезаражения всей группы. Следует знать, что при нормальных условиях содержания и кормления, для заражения здорового теленка требуются миллионы и миллиарды (!) живых клеток бактерий и вирионов вируса. Если инфекционного агента будет недостаточно для заражения, то животное не заболеет! На этом и строится вся схема №2.

Положительные стороны схемы №2 .
Одновременная профилактика существующих инфекций у молодняка.
Дезинфекции - это недорогой метод профилактики.

Недостатки схемы №2.
С помощью барьерного метода можно сдерживать, но не искоренить инфекцию.
Требуются дополнительные помещения
Необходим персонал, отдельно(!) занимающийся только вопросами дезинфекции, изоляции и т.д.

Способ №3 - специфическая профилактика ИРТ.
Проще говоря, речь пойдет о вакцинациях, типах биопрепаратов, схемах применениях, методах введения и образующемся иммунитете.

Вакцины против ИРТ бывают:
живые и инактивированные
маркированные и без маркера
моновакцины и ассоциированные

Преимущества живых вакцин

Индукция напряженного иммунитета в сжатые сроки. Формирование преимущественно клеточного иммунитета. Возможность интраназального использования и формирования местного иммунитета в раннем возрасте. В пределах одного производителя, доза живой вакцины стоит дешевле инактивированной.

Недостатки живых вакцин

Для некоторых живых вакцин против ИРТ вопрос безопасности остается открытым. При внутримышечном введении телятам с высоким титром колостральных антител происходит нейтрализация вакцинного вируса. Жесткие условия хранения и транспортировки.

Преимущество инактивированных вакцин

Безопасность. Отсутствие какого-либо живого вируса BHV-1 в хозяйстве.

Недостатки инактивированных вакцин

Индукция преимущественно гуморального иммунитета, но не клеточного или местного. Невозможность создать активный иммунитет в раннем возрасте (менее 30 дн). Возможность проявления осложнений на месте введения за счет пролонгирующих адъювантов.

Преимущества маркированных вакцин
Возможность отличить вирус вакцины от эпизоотического BHV-1. Возможность отличить антитела к вакцине от таковых к полевой инфекции. Проведение мониторинга эпизоотического состояния по ИРТ и динамики вытеснения полевого вируса.

Преимущества вакцин без маркера

Доза вакцины без маркера стоит дешевле маркерной.

Недостатки вакцин без маркера

Наличие антител к вакцине "имитирует" контакт с полевым возбудителем или вирусоносительство. Невозможность достоверно определить эпизоотический статус хозяйства и контролировать иммунный фон животных.

В отношении моно- или ассоциированных вакцин нет как таковых преимуществ или недостатков. Если хозяйство неблагополучно только по ИРТ, то нет смысла дополнительно оплачивать "ненужные" валентности. И, наоборот, при наличии нескольких возбудителей в стаде профилактика ассоциированной вакциной дешевле. При этом удобнее выстраивать схемы иммунизации, а также снижаются затраты времени и стрессовые нагрузки на животных.

Осталось ответить на последний вопрос.
Что нового в профилактике ИРТ сегодня?

На российском рынке впервые появилась живая МАРКИРОВАННАЯ вакцина - Бовилис IBR marker производства компании Интервет (Нидерланды).
Вакцина обладает рядом неоспоримых преимуществ. Высочайший уровень безопасности - возможно применение на любом (!) сроке стельности. Индукция напряженного иммунитета через 96 ч при интраназальном и через 7 дней при внутримышечном введении. Однократное введение формирует иммунитет на срок не менее 6 месяцев. Возможность надежно защитить теленка с 14 дневного возраста вне зависимости от уровня колостральных антител в крови. Маркер вакцины позволяет отслеживать динамику элиминации полевого вируса, а также позволяет достоверно судить об эпизоотическом статусе хозяйства. Специальный растворитель гарантирует стабильнсть препарата, а спрей-насадка - качественную интраназальную вакцинацию.
Программа вакцинации с использованием Бовилис IBR marker:

Первое применение в хозяйстве:

Одномоментная вакцинация всего поголовья старше 3 месяцев однократно внутримышечно или интраназально в дозе 2 мл (или по 1 мл в каждую ноздрю). Вакцинация телят возрастом от 14 дней до 3 месяцев строго интраназально по 1 мл в каждую ноздрю с повторным введением через 3,5 - 4 месяца.

Вакцинация телят:

Всех телят прививают в возрасте 2 недель строго интраназально, вакцинацию повторяют в возрасте 4 месяцев внутримышечно или интраназально.

Вакцинация коров и быков-производителей.

Ревакцинацию здоровых животных, вне зависимости от физиологического состояния, проводят через каждые 6 месяцев.
Программа вакцинации гарантирует полную защиту животных от инфекционного ринотрахеита КРС.

При применении вакцины Бовилис IBR marker рекомендуется каждые 6 мес. исследовать сыворотки крови от разных возрастных групп животных с целью мониторинга и прогнозирования инфекции. При полном вытеснении эпизоотического вируса допускается переход на вакцинацию маркированной инактивированной вакциной Bovilis IBR Мarker inac без снижения степени защиты хозяйства.

Несмотря на то что живые вакцины широко используют в ветеринарной практике, в последние годы все большее значение приобретают инактивированные препараты в силу своей безопасности. Это необходимо учитывать при вакцинопрофилактике болезней, возбудители которых способны длительно персистировать в организме животных в скрытой форме, затрудняющей их диагностику .

В настоящее время для изготовления инактивированных вакцин против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (ИРТ КРС) используют первичнотрипсинизированные культуры клеток (почки теленка, бычьего тестикула), вирулентный штамм вируса 4016 с относительно невысоким уровнем накопления в этих клеточных культурах (6,0--6,5 1дТЦД5о/мл). Все это обусловливает трудоемкость технологии изготовления клеточного и вирусного сырья и определенным образом влияет на эффективность вакцинного препарата.

Цель исследований - разработка новой инактивированной вакцины против ИРТ КРС на основе аттенуированного штамма и более перспективной технологии, основанной на применении продуктивной перевиваемой культуры клеток и роллерного способа выращивания вируса.

Материалы и методы. В работе использовали перевиваемую культуру клеток МДВК; вакцинный штамм ТК-А вируса ИРТ КРС (активность 7,25-8,0 1дТЦД5о/мл); вирулентный штамм 4016 этого вируса (активность 6,0-6,5 1дТЦД адъюванты: минеральное масло, гидроокись алюминия с сапонином и аэросил.

Культуру клеток и вирус выращивали во вращающихся 3-литровых сосудах на роллерных установках (производительность 50 л вируссодержащей суспензии за цикл) по разработанной во ВНИИВВиМ методике. Вирусное сырье инактивировали теотропином или сернокислой медью в конечной концентрации 0,1 % при 37±1 °С в течение 7 сут. Полноту инактивации вируса оценивали в трех последовательных пассажах культуры клеток МДВК с интервалом 5 сут.

Для изготовления вакцины к инактивированному антигенсодержащему материалу в качестве адъювантов добавляли минеральное масло, или ГОА с сапонином, или аэросил. Вакцину проверяли на стерильность, полноту инактивации, безвредность, антигенную и иммуногенную активность.

Для оценки безвредности каждую серию вакцины вводили взрослым кроликам внутримышечно по 3,0 мл и в течение 7 сут наблюдали за клиническим состоянием животных.

5о/мл); инактиватор теотропин Антигенную и иммуногенную активность контролировали на взрослых кроликах и б-8-месячных телятах. Для этого кроликов двукратно вакцинировали внутримышечно в дозах 0,5 и 1 мл, а телят - подкожно в дозах 1, 2 и 5 мл с интервалом 14 дней. Через 14 дней после повторной прививки в сыворотке крови животных определяли уровень вируснейтрализующих антител, а телят подвергали контрольному заражению вирулентным штаммом 4016 вируса ИРТ КРС.

Результаты исследований и обсуждение. Данные по сравнительной оценке уровня накопления вакцинного и эпизоотического штаммов вируса ИРТ КРС с использованием соответственно перевиваемых и первично трипсинизированных клеток, роллерного и стационарного способов выращивания, а также технологии изготовления инактивированной вакцины из указанных штаммов представлены в таблице 1.

Препараты из вакцинного штамма, выращенного в перевиваемой культуре клеток МДВК, по экономическим и технологическим показателям значительно превосходили аналог из эпизоотического штамма 4016. При этом теотропин в качестве инактиватора обеспечивал экологическую безопасность убитой вакцины из штамма ТК-А.

Оценка иммуногенности различных образцов инактивированной вакцины против ИРТ КРС показала преимущество препаратов из вакцинного штамма ТК-А, выращенного в перевиваемой культуре клеток МДВК, по сравнению с таковой из вирулентного штамма 4016 (табл. 2). Препараты из вакцинного штамма в дозе 2,04-2,0 мл обеспечивали защиту привитых животных в течение 12 мес, а из эпизоотического даже в большей дозе 10,04-10,0 мл - не бо Иммунный ответ у телят и кроликов изучали, прививая их инактивированной вакциной против ИРТ КРС из штамма ТК-А, выращенного в перевиваемой культуре клеток МДВК в разных дозах (табл. 3).

У телят и кроликов, привитых двукратно инактивированной вакциной против ИРТ КРС из аттенуированного штамма ТК-А, титр вируснейтрализующих антител в сыворотке крови был одинаковым (см. табл. 3).

Минеральное масло при введении его в дозе 5,0 мл вызывало у некоторых телят на месте инъекции образование припухлости диаметром до 10 см при удовлетворительном общем состоянии животных. В производственных условиях такие осложнения наблюдали у 25- 30 % привитого скота, переходящие в отдельных случаях в гнойно-некротические абсцессы. Данное обстоятельство побудило нас продолжить работу по снижению реактогенности (местной реакции) масляной вакцины и одновременно искать другие эффективные и безвредные адъюванты.

При применении масляной вакцины в более низких дозах (1,0 и 2,0 мл) местная реакция на введение препарата была слабой или умеренной, иммунный ответ у привитых животных не снижался.

В производственных условиях опытные образцы указанной вакцины, хранившейся 1 год при 2-8 °С, в дозах 1,0 и 2,0 мл вызывали у животных на месте введения препарата умеренную или слабую реакцию и обеспечивали формирование напряженного иммунитета продолжительностью 12 мес.

После иммунизации телят инактивированной вакциной против ИРТ КРС с ГОА и сапонином (срок хранения 1 год при 2--80С) в дозах 5,0 и 2,0 мл общее состояние их было удовлетворительным, отмечали слабую местную реакцию, напряженный иммунитет сохранялся 12 мес.

При заражении иммунизированных и контрольных животных вирулентным штаммом 4016 вируса ИРТ КРС первые были устойчивы к данному возбудителю, а у непривитых отмечали повышение температуры тела до 41,0°С, слюнотечение, конъюнктивит и другие признаки, характерные для ИРТ КРС.

Максимальное накопление вируснейтрализующих антител регистрировали при двукратной иммунизации животных инактивированной вакциной против ИРТ КРС с интервалом 14-28 дней (табл. 4). Результаты опытов также свидетельствуют о том, что кроликов можно использовать в качестве лабораторной модели для контроля иммуногенности (по сероконверсии) инактивированной вакцины против ИРТ КРС.

Заключение. Разработана перспективная технология изготовления инактивированной вакцины против ИРТ КРС, отличающаяся экономичностью, высокой иммуногенностью и безопасностью получаемого препарата. Эффективность ее основана на использовании вакцинного штамма ТК-А, продуктивной перевиваемой линии клеток МДВК и роллерного метода выращивания, что исключает стадию концентрирова-ния вирусного сырья и делает производство инактивирован-ной вакцины против ИРТ КРС экономичным.

Н. И. ЗАКУТСКИЙ, В. И. ЖЕСТЕРЕВ, И. Ф. ВИШНЯКОВ, Л. Д. КОНАКОВА, Л. И. АНИСИМОВА, А. А. ШЕВЧЕНКО ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии